UNIVERSIDAD
AUTONOMA
DEL
ESTADO DE MÉXICO
FACULTAD
DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
“TINCIÓN
DE ORGANELOS”
INTEGRANTES:
CORREA
MORA ITZEL ALEJANDRA
DE
NOVA CERROS BRENDA ALEJANDRA
ARGUELLO
DOMINGUEZ MAXIMILIANO
LOPEZ
SERRATO ARISBETH RUBI
VILLALVA
ANDRADE EDITH REBECA
TINCIÓN DE ORGANELOS
Una tinción o
coloración es una técnica auxiliar usada en microscopía para mejorar el
contraste de la imagen vista al microscopio. Dado que hay tejidos y células que
apenas poseen color, en biología y medicina se recurre a la tinción para
resaltar las diversas estructuras de los tejidos biológicos que se van a
observar al microscopio. Los tintes nos permiten examinar muestras de tejido,
poblaciones celulares e incluso nos pueden ayudar a distinguir los diferentes
orgánulos presentes en la célula.
NÚCLEO
El núcleo de una célula
que no está en proceso de división, denominado célula en interfase, contiene
los siguientes componentes:
·
Cromatina
·
Nucléolo
·
Nucleoplasma
CROMATINA
La cromatina no tiene
aspecto homogéneo, se observan cúmulos de cromatina densamente teñida en un
fondo más claro. El material muy coloreado es cromatina condensada denominada
heterocromatina y el material más claro conocida como eucromatina.
·
La
heterocromatina se tiñe con los colorantes básicos y hematoxilina; también se
le demuestra con la técnica de Feulgen y con los colorantes vitales
fluorescentes como los Hoechst y el yoduro de propidio.
·
La
eucromatina no se observa con el pronóstico óptico. Se encuentra del
nucleoplasma en las zonas claras entre la heterocromatina.
Su contenido de DNA
explica su reacción fuertemente positiva cuando se tiñe con la técnica de
Feulgen.
(Edith Rebeca Villalva
Andrade)
NUCLÉOLO
El nucléolo se colorea
muy bien con hematoxilina y con colorantes básicos, y metacromáticamente con
colorantes de tionina.
(Edith Rebeca Villalva
Andrade)
CITOPLASMA
Eosina tiñe
componentes básicos (acidófilos) en tonos de color rosa, gracias a su
naturaleza aniónica o ácida como el citoplasma.
(Rubí Arisbeth Serrato
Lopez)
RIBOSOMAS
Los ribosomas son
estructuras intensamente basofilas, que reaccionan con los colorantes básicos
como el azul de metileno o el azul de toluidina debido a la gran cantidad de
RNA que poseen. Por tanto las zonas de citoplasma que se tiñen con esos
colorantes suelen ser ricas en ribosomas. La hematoxilina tiñe ribosomas en
azul.
(Rubí Arisbeth Serrato
Lopez)
RETICULO ENDOPLASMICO RUGOSO
Se tiñe intensamente
con los colorantes básicos.
Forma varios rímeros de
membrana que en la microscopia óptica corresponde a la denominada sustancia de
Nissi. La tiñe de color morado.
(Edith Rebeca Villalva
Andrade)
RETÍCULO ENDOPLASMÁTICO LISO
Reticulina,
impregnación argentica de Gomori, baño de tritio, proteína verde de GPF y
plata.
(Brenda Alejandra De
Nova Cerros)
APARATO DE GOLGI
Eosina, hematoxilina de
Harris y Welgert, sales de plata, el osmio, nitrato de plata y dicromato de
potasio.
(Brenda Alejandra De
Nova Cerros)
MITOCONDRIA
La fucsina ácida se
emplea en la coloración del colágeno y del tejido muscular liso. También sirve
para teñir mitocondrias. En los cortes para microscopía óptica se suelen
detectar las mitocondrias sobre la base del contenido de fosfolípidos de las
membranas que las rodean, por ejemplo por tinción con fucsina ácida.
Además, las
mitocondrias se pueden detectar mediante tinción histoquímica por sus enzimas,
por ejemplo la citocromooxidasa
Es posible observar las
mitocondrias en células vivas, mediante el método de contraste de fase en especial,
después de la tinción supravital con verde Jano
Hematoxilina: Tiñe
núcleos, ácidos nucleicos y estructuras basofílicas (mitocondrias y ribosomas)
en azul.
(Itzel Alejandra Correa
Mora)
LISOSOMA
La técnica de tinción
es la Acridina y estudios de microscopio de fluorescencia.
(Brenda Alejandra De
Nova Cerros)
CILIOS
Método de Rhodes
Las células bacterianas
con pequeños cilios presentaron tonalidades más oscuras o pardas sobre el fondo
del campo con respecto a las bacterias que no presentan cilios.
Método de Tribondeau.
Se visualizara
alrededor de las bacterias que presentan cilios un color violáceo sobre el
fondo y el resto de la bacteria.
(Rubí Arisbeth Serrato Lopez)
Tinción de Leifson:
Es una tinción para lograr observar flagelos de bacterias. Usar Rosanilina sirve como tinción principal, y ácido tánico es agregado a la solución como mordiente.
Para preparar la solución de uso, se mezclan cantidades iguales de las soluciones A, B, C y se guarda en frasco cerrado herméticamente en la nevera donde es estable durante varias semanas.
Hacer un círculo en un portaobjetos perfectamente limpio para lo cual previamente fue sumergido en mezcla crómica durante 24 horas, lavado posteriormente con agua destilada, enjuagado con alcohol y secado con un trozo de tela limpio. Desengrasarlo pasando por una flama varias veces.
Extensión demuestra: Colocar dentro del círculo con pipeta Pasteur, una gotita de la suspensión bacteriana e inclinar el portaobjetos de uno y otro lado para extender la
muestra.
Fijación: Fijar la preparación al aire ya que si esta operación se hace usando la flama del mechero se pueden destruir los flagelos
Secado: Humedecer la preparación con el Colorante de Leifson y dejarla en reposo a temperatura ambiente durante 10 minutos en tiempo caluroso o en la incubadora en tiempo frío.
Lavado: Lavar con agua destilada y observar resultados.
Es una tinción para lograr observar flagelos de bacterias. Usar Rosanilina sirve como tinción principal, y ácido tánico es agregado a la solución como mordiente.
Para preparar la solución de uso, se mezclan cantidades iguales de las soluciones A, B, C y se guarda en frasco cerrado herméticamente en la nevera donde es estable durante varias semanas.
Hacer un círculo en un portaobjetos perfectamente limpio para lo cual previamente fue sumergido en mezcla crómica durante 24 horas, lavado posteriormente con agua destilada, enjuagado con alcohol y secado con un trozo de tela limpio. Desengrasarlo pasando por una flama varias veces.
Extensión demuestra: Colocar dentro del círculo con pipeta Pasteur, una gotita de la suspensión bacteriana e inclinar el portaobjetos de uno y otro lado para extender la
muestra.
Fijación: Fijar la preparación al aire ya que si esta operación se hace usando la flama del mechero se pueden destruir los flagelos
Secado: Humedecer la preparación con el Colorante de Leifson y dejarla en reposo a temperatura ambiente durante 10 minutos en tiempo caluroso o en la incubadora en tiempo frío.
Lavado: Lavar con agua destilada y observar resultados.
(Maximiliano Domínguez
Arguello)
MESOSOMAS
A microscopio
óptico se pueden detectar con tinción negativa con ácido fosfotúngstico.
El ácido fosfotúngstico
es un heteropoliácido para el fósforo y el tungsteno con la fórmula
El compuesto es
conocido por una variedad de nombres y siglas, incluyendo los principales son:
·
Ácido
fosfotúngstico
·
Tungstofosfórico
ácido (TPA)
·
Ácido
12-fosfotúngstico
·
Ácido
12-tungstofosfórico
·
Ácido
dodecatungstofosfórico
Es ampliamente
utilizado en la preparación de la tinción histológica tricrómico Azan y tinción
negativa. Se une a las fibras de colágeno y tejido conectivo y sustituir los
aniones de estos materiales de forma selectiva blanqueo.
(Maximiliano Domínguez
Arguello)
MICROTUBULOS
Tinción negativa esta
brinda más resolución y es una técnica que permite contrastar las muestras
mediante una sustancia opaca a los fotones (microscopia óptica) o a los
electrones (microscopia electrónica).Este tipo de tinción utiliza colorantes
neutros y ácidos
Ya que tienen poca
afinidad por la célula Con colorante de nigrosina.
(Maximiliano Domínguez
Arguello)
CENTRIOLOS
Una de las
técnicas más utilizadas en la histología animal es la tinción de
hematoxilina y eosina. Las características de los compuestos que la componen
hacen posible observar al microscopio óptico las células
individualizadas y sus cuerpos basales.
Hematoxilina: este
compuesto se extrae de Haematoxylum campechianum, una planta leguminosa. la
planta se obtiene una sustancia que al oxidarse adquiere un color morado. Para
aumentar su capacidad colorante se combina con iones metálicos de hierro o
aluminio, consiguiéndose así la hematoxilina. La hematoxilina se une
intensamente a las cargas negativas (aniones), como los ácidos. Es por esto que
se une fuertemente al ADN (ácido desoxirribonucleico).
(Maximiliano
Domínguez Arguello)
BIBLIOGRAFIA
M.S CELANI DE BASSI, J.
FERNANDEZ SURRIBAS E I. VON LAWZEWITSCH Lecciones de histología veterinaria
Editorial hemisferio sur Buenos Aires.
C. ROLAND LESSON,
HOMAS. S LESSON, ANTHONY A. PAPARO Histología Editorial Interamericana México
D.F.
WILLIAM J. BANKS
Histología veterinaria aplicada Editorial el manual moderno México.
HORTS DIETER DELLMAN
Histología veterinaria Editorial Acribia Zaragoza España.
https://biologia.laguia2000.com/histologia/tincion-de-hematoxilina-eosina
https://es.slideshare.net/NancyBarrera22/generalidades-de-tecnicas-de-tincion-en-histologia
https://estructurayfuncioncelularbacteriana.wikispaces.com/Mesosomas
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