domingo, 15 de octubre de 2017

EQUIPO 7

EQUIPO 7
INTEGRANTES:
Ø Christian Omar Sánchez Lopez
Ø David Fernando Gutiérrez  Franco
Tinción de organelos
Núcleo
Azul de metileno se utiliza en células animales, para hacer más visibles sus núcleos
Nile Blue o Nile blue A, es decir, azul Nilo, Hematoxilina-eosina, Tinción HPS, Tinción HOPS (Los núcleos aparecen en azul)
Tinción de Papanicolau Los núcleos aparecen de color entre azul y negro.
Tinción de Van Gieson Los núcleos celulares aparecen en colores de marrón a negro.
Tinción de Movat los núcleos aparecen en negro
Azán tiñe los núcleos de rojo

Mitocondria
En el citoplasma, el Verde Jano está en forma reducida, incoloro, pero en el interior de la mitocondria es oxidado por las enzimas locales, adquiere el color verde azulado, típico de la coloración vital.
La fucsina ácida puede ser utilizada para colorear colágeno, músculo liso o mitocondrias.

Nucléolo
La tinción de Nissl es un método fundamental que utiliza los colorantes acidofilos como el azul de metileno, el violeta de cresilo, la tionina, la ematoxilina, el azul de toluidina o el rojo neutro que se unen al ARN conteniendo en los ribosomas, tiñendo el núcleo, el nucléolo, y los ribosomas del retículo endoplásmico rugoso o sustancia de Nissl.


Aparato de Golgi
La técnica de Golgi es un sencillo procedimiento histológico que revela la morfología neuronal completa en tres dimensiones.  Este método se fundamenta en la formación de depósitos opacos intracelulares de cromato argéntico, producto de la reacción entre el bicromato de potasio y el nitrato de plata.

Lisosomas
El rojo neutro es utilizado en medicina para el diagnóstico de micosis dada su elevada solubilidad en agua que le posibilita atravesar la membrana plasmática del hongo y almacenarse en los lisosomas.

Proteosomas
El uso de algunas técnicas de tinción como el sudan negro, sudan lll, sudan IV, rojo oleoso y el osmio permiten identificarlos con claridad estos organelos.

Retículos endoplasmáticos

A causa de su contenido de ribosomas, estos componentes celulares tienen alta afinidad por los colorantes básicos, por ejemplo: tionina y por la hematoxilina. 

EQUIPO 6

Universidad Autonoma del Estado de Mexico
Facultad de Medicina Veterinaria Zootecnista


Biología celular
"Tinciones en organelos"

Integrantes
Alvarado Lopez Jesús Israel
Cruz Pineda Gabriela
Martinez Gutierrez Juan Carlos
Nieto Morales Maria Susana

Equipo: 6
Tincion en oŕganelos 

Organelo
Método de tinción
Color que adquiere
Ribosomas
Azul de toloudina
Azul
Ematoxilina-eosina
Azul-morado
Mucicarmin de Mayer
Azul oscuro
Wright
Azul
Retículo endoplasmatico liso
Tinción de Nissl
Purpura
Reticulo endoplasmatico rugoso
Tincion de Nissl, violeta de cresilo
Purpura (cúmulos)
Endosoma
 Safranina
Depende del pH
Núcleo
 Azul nilo
Hematoxilina
Azul
Azul
Nucleolo
Hematoxilina-eosina
Violeta
Mitocondria
Verde janus al 0.01%
Azul, al verde brillante
Lisosomas
Rojo neutro (Ácido-base)
Rojo neutro
Golgi
Impregnacion argentina
 Reaccion negra
Vesiculas
Tinta china
 Azul
Peroxisoma
Fuchina basica
Depende del pH
Proteosoma
Verde malaquita
Depende del pH




EQUIPO 5

INTEGRANTES:
GIEGO HERNANDEZ URIBE
ANDREA DÍAZ XELHUANTZI
LESLIE LORELLI SÁNCHEZ GARCÍA

MICROSCOPIA DE ORGÁNULOS
TINCIÓN
Es la técnica en la que se utilizan sustancias hidrosolubles para colorear los distintos tejidos a observar en el microscopio.  Esto es necesario para poder identificar los distintos tejidos dispuestos a observarse ya que ayudan a resaltar la estructuras de los tejidos biológicos.  Esto también implica que se deben utilizar colorantes específicos determinados a cada sustrato, al igual que la tinción también se utiliza el marcado fluorescente.
·         Al colorear las células de manera contrastante es más fácil estudiar su ubicación y morfología.
Orgánulo
tinción
color
Retículo endoplasmático liso
·         Tinción de Gram negativa
·         Tinción nissi
·         Purpura
·         Eosina
·         Azul
Alveolo
·         Hematoxilina
·         Azul
·         Eosina
·         Purpura
Lisosoma
·         Fosfatasa acida de Burstone
·         Rojo
Ribosoma
·         Daminobencida
·         Marrón
Núcleo
·         Carmín
·         Rojo
·         Azul brillante de comassie
·         Azul
·         Azul de metileno
·         Azul
·         Azul liso
·         Azul
·         Bromuro de e tapio
·         Naranja fluorescente
·         DAPI
·         Fluorescencia azul
·         Hematoxilina
·         Azul violeta a negro
·         Hoechst
·         Amarillo
·         Lugol
·         Marrón se torna negro
·         Naranja de acridina
·         Verde, naranja, azul y rojo
·         Argénica
·         Plata
Ribosomas
·         Tinción negativa con ácido fosfotúngstico
·         Violeta
·         Tinción de acetato de uranilo
·         Rosa con morado
Retículo Endoplasmático Rugoso
·         NISSL 
·         Negro
Vesículas
·         Hematoxilina-eosina
·         Azul
Proteosomas
·         Sudan
·         Rojo anaranjado
Aparato de Golgi
·         Tinción negativa
·         Azul
·         tinción argénica
·         Café
Endosomas
·         tinción de hematoxilina férrica
·         Morado
Mitocondria
·         Tinción de los cortes fijados:
·         Hematoxilina de hierro
·         Verde rápido de Regaud


·         Rosa

·         Verde
·         Tinción vital
·         Colorante verde Jano B
                                                                                                                
Bibliografía:
WALTER V BROWN. CITOLOGÍA. EDITORIAL OMEGA.
GELALD KARP. BIOLOGIA CELULAR Y MOLECULAR, CONCEPTOS Y EXPERIMENTOS. MAC GRAW HILL.
RICARDO PANIAGUA. CITOLOGÍA E HISTOLOGÍA VEGETAL Y ANIMAL. MC GRAW HILL.


EQUIPO 4

UNIVERSIDAD AUTONOMA
DEL ESTADO DE MÉXICO

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA



“TINCIÓN DE ORGANELOS”


INTEGRANTES:
CORREA MORA ITZEL ALEJANDRA
DE NOVA CERROS BRENDA ALEJANDRA
ARGUELLO DOMINGUEZ MAXIMILIANO
LOPEZ SERRATO ARISBETH RUBI
VILLALVA ANDRADE EDITH REBECA




TINCIÓN DE ORGANELOS
Una tinción o coloración es una técnica auxiliar usada en microscopía para mejorar el contraste de la imagen vista al microscopio. Dado que hay tejidos y células que apenas poseen color, en biología y medicina se recurre a la tinción para resaltar las diversas estructuras de los tejidos biológicos que se van a observar al microscopio. Los tintes nos permiten examinar muestras de tejido, poblaciones celulares e incluso nos pueden ayudar a distinguir los diferentes orgánulos presentes en la célula.

NÚCLEO
El núcleo de una célula que no está en proceso de división, denominado célula en interfase, contiene los siguientes componentes:
·         Cromatina
·         Nucléolo
·         Nucleoplasma

CROMATINA
La cromatina no tiene aspecto homogéneo, se observan cúmulos de cromatina densamente teñida en un fondo más claro. El material muy coloreado es cromatina condensada denominada heterocromatina y el material más claro conocida como eucromatina.
·         La heterocromatina se tiñe con los colorantes básicos y hematoxilina; también se le demuestra con la técnica de Feulgen y con los colorantes vitales fluorescentes como los Hoechst y el yoduro de propidio.
·         La eucromatina no se observa con el pronóstico óptico. Se encuentra del nucleoplasma en las zonas claras entre la heterocromatina.
Su contenido de DNA explica su reacción fuertemente positiva cuando se tiñe con la técnica de Feulgen.
(Edith Rebeca Villalva Andrade)

NUCLÉOLO
El nucléolo se colorea muy bien con hematoxilina y con colorantes básicos, y metacromáticamente con colorantes de tionina.
(Edith Rebeca Villalva Andrade)

CITOPLASMA
La tinción hematoxilina-eosina corresponde a la mezcla de hematoxilina y eosina.
Eosina  tiñe componentes básicos (acidófilos) en tonos de color rosa, gracias a su naturaleza aniónica o ácida como el citoplasma.
(Rubí Arisbeth Serrato Lopez)

RIBOSOMAS
Los ribosomas son estructuras intensamente basofilas, que reaccionan con los colorantes básicos como el azul de metileno o el azul de toluidina debido a la gran cantidad de RNA que poseen. Por tanto las zonas de citoplasma que se tiñen con esos colorantes suelen ser ricas en ribosomas. La hematoxilina tiñe ribosomas en azul.
(Rubí Arisbeth Serrato Lopez)

RETICULO ENDOPLASMICO RUGOSO
Se tiñe intensamente con los colorantes básicos.
Forma varios rímeros de membrana que en la microscopia óptica corresponde a la denominada sustancia de Nissi. La tiñe de color morado.  
(Edith Rebeca Villalva Andrade)

RETÍCULO ENDOPLASMÁTICO LISO
Reticulina, impregnación argentica de Gomori, baño de tritio, proteína verde de GPF y plata.
(Brenda Alejandra De Nova Cerros)

APARATO DE GOLGI
Eosina, hematoxilina de Harris y Welgert, sales de plata, el osmio, nitrato de plata y dicromato de potasio.
(Brenda Alejandra De Nova Cerros)

MITOCONDRIA
La fucsina ácida se emplea en la coloración del colágeno y del tejido muscular liso. También sirve para teñir mitocondrias. En los cortes para microscopía óptica se suelen detectar las mitocondrias sobre la base del contenido de fosfolípidos de las membranas que las rodean, por ejemplo por tinción con fucsina ácida.
Además, las mitocondrias se pueden detectar mediante tinción histoquímica por sus enzimas, por ejemplo la citocromooxidasa
Es posible observar las mitocondrias en células vivas, mediante el método de contraste de fase en especial, después de la tinción supravital con verde Jano
Hematoxilina: Tiñe núcleos, ácidos nucleicos y estructuras basofílicas (mitocondrias y ribosomas) en azul.
(Itzel Alejandra Correa Mora)

LISOSOMA
La técnica de tinción es la Acridina y estudios de microscopio de fluorescencia.
(Brenda Alejandra De Nova Cerros)

CILIOS
Método de Rhodes
Las células bacterianas con pequeños cilios presentaron tonalidades más oscuras o pardas sobre el fondo del campo con respecto a las bacterias que no presentan cilios.
Método de Tribondeau.
Se visualizara alrededor de las bacterias que presentan cilios un color violáceo sobre el fondo y el resto de la bacteria.      (Rubí Arisbeth Serrato Lopez)
FLAGELOS
Tinción de Leifson:
Es una tinción para lograr observar flagelos de bacterias. Usar Rosanilina sirve como tinción principal, y ácido tánico es agregado a la solución como mordiente.
Para preparar la solución de uso, se mezclan cantidades iguales de las soluciones A, B, C y se guarda en frasco cerrado herméticamente en la nevera donde es estable durante varias semanas.
Hacer un círculo en un portaobjetos perfectamente limpio para lo cual previamente fue sumergido en mezcla crómica durante 24 horas, lavado posteriormente con agua destilada, enjuagado con alcohol y secado con un trozo de tela limpio. Desengrasarlo pasando por una flama varias veces.
Extensión  demuestra: Colocar dentro del círculo con pipeta Pasteur, una gotita de la suspensión bacteriana e inclinar el portaobjetos de uno y otro lado para extender la
muestra.
Fijación: Fijar la preparación al aire ya que si esta operación se hace usando la flama del mechero se pueden destruir los flagelos
Secado: Humedecer la preparación con el Colorante de Leifson y dejarla en reposo a temperatura ambiente durante 10 minutos en tiempo caluroso o en la incubadora en tiempo frío.
Lavado: Lavar con agua destilada y observar resultados.
(Maximiliano Domínguez Arguello)

MESOSOMAS
A microscopio óptico se pueden detectar con tinción negativa con ácido fosfotúngstico.
El ácido fosfotúngstico es un heteropoliácido para el fósforo y el tungsteno con la fórmula
El compuesto es conocido por una variedad de nombres y siglas, incluyendo los principales son:
·         Ácido fosfotúngstico
·         Tungstofosfórico ácido (TPA)
·         Ácido 12-fosfotúngstico
·         Ácido 12-tungstofosfórico
·         Ácido dodecatungstofosfórico
Es ampliamente utilizado en la preparación de la tinción histológica tricrómico Azan y tinción negativa. Se une a las fibras de colágeno y tejido conectivo y sustituir los aniones de estos materiales de forma selectiva blanqueo.
(Maximiliano Domínguez Arguello)

MICROTUBULOS
Tinción negativa esta brinda más resolución y es una técnica que permite contrastar las muestras mediante una sustancia opaca a los fotones (microscopia óptica) o a los electrones (microscopia electrónica).Este tipo de tinción utiliza colorantes neutros y ácidos   
Ya que tienen poca afinidad por la célula Con colorante de nigrosina.
(Maximiliano Domínguez Arguello)



CENTRIOLOS
Una de las técnicas más utilizadas en la histología animal es la tinción de hematoxilina y eosina. Las características de los compuestos que la componen hacen posible observar al microscopio óptico las células individualizadas y sus cuerpos basales.
Hematoxilina: este compuesto se extrae de Haematoxylum campechianum, una planta leguminosa. la planta se obtiene una sustancia que al oxidarse adquiere un color morado. Para aumentar su capacidad colorante se combina con iones metálicos de hierro o aluminio, consiguiéndose así la hematoxilina. La hematoxilina se une intensamente a las cargas negativas (aniones), como los ácidos. Es por esto que se une fuertemente al ADN (ácido desoxirribonucleico).
(Maximiliano Domínguez Arguello)

BIBLIOGRAFIA
M.S CELANI DE BASSI, J. FERNANDEZ SURRIBAS E I. VON LAWZEWITSCH Lecciones de histología veterinaria Editorial hemisferio sur Buenos Aires.

C. ROLAND LESSON, HOMAS. S LESSON, ANTHONY A. PAPARO Histología Editorial Interamericana México D.F.

WILLIAM J. BANKS Histología veterinaria aplicada Editorial el manual moderno México.

HORTS DIETER DELLMAN Histología veterinaria Editorial Acribia Zaragoza España.

https://biologia.laguia2000.com/histologia/tincion-de-hematoxilina-eosina

https://es.slideshare.net/NancyBarrera22/generalidades-de-tecnicas-de-tincion-en-histologia


https://estructurayfuncioncelularbacteriana.wikispaces.com/Mesosomas